Articles

Fosfolambano: Un Regulador Prominente de la Contractilidad Miocárdica

Regulación del Retículo Sarcoplásmico Cardíaco Captación de Ca2 + por Fosfolambano

A principios de la década de 1970, Arnold Katz (Tada et al1) informó de un descubrimiento que demostró que la fosforilación de membranas aisladas del retículo sarcoplásmico cardíaco se producía principalmente en una proteína de bajo peso molecular. Esta fosfoproteína fue llamada fosfolamban, de las palabras de la raíz griega que significan «recibir fosfato».»1 El fosfolambano es una pequeña proteína, que contiene 52 residuos de aminoácidos, y está presente en los músculos esqueléticos cardíacos, lisos y de contracción lenta. Sin embargo, sus efectos reguladores se han estudiado principalmente en el músculo cardíaco. Los estudios in vitro indicaron que el fosfolambano puede ser fosforilado en tres sitios distintos por varias proteínas quinasas: la serina 10, por la proteína quinasa C; la serina 16, por la proteína quinasa dependiente de cAMP o cGMP; y la treonina 17, por la proteína quinasa dependiente de Ca2+ – calmodulina.23 Cada fosforilación está asociada con la estimulación de las tasas iniciales de captación de Ca2+ en el retículo sarcoplásmico cardíaco, que es principalmente pronunciada a baja , lo que resulta en un aumento general de la afinidad de la bomba de Ca2+ por Ca2+.45 Sobre la base de estas observaciones, inicialmente se planteó la hipótesis de que el fosfolambano fosforilado funciona como un estimulador de la enzima Ca2+-ATPasa (SERCA2) del retículo sarcoplásmico cardíaco. Sin embargo, a finales de la década de 1980, se produjo un avance significativo que demostró que el fosfolambano desfosforilado es en realidad un inhibidor del transporte de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco para Ca2+ y que la fosforilación alivia este efecto inhibitorio, dando la apariencia de estimulación inducida por fosforilación.6 Este hallazgo, junto con la identificación de una proteína fosfatasa asociada al retículo sarcoplásmico cardiaco que puede desfosforilar fosfolambán7,nos ha llevado a comprender actualmente el fosfolambán como un inhibidor reversible de la actividad de la ATPasa Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardiaco.

El fosfolambano también se fosforila in situ durante la estimulación β-adrenérgica. Estudios en corazones latentes intactos o miocitos cardíacos aislados han demostrado que tanto la serina 16 como la treonina 17 en el fosfolambano se fosforilan durante la estimulación con isoproterenol.89 Se sugirió que la fosforilación del fosfolambano y los aumentos acompañados en las tasas de captación de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco eran al menos parcialmente responsables de los efectos estimulantes de los agonistas β en el corazón de los mamíferos.

Características estructurales del fosfolambano

La estructura del fosfolambano no se conoce actualmente, pero en base a su secuencia de aminoácidos, se han propuesto varios modelos. Se acepta generalmente que hay dos dominios principales: un dominio hidrofílico (AA 1-30, que indica residuos de aminoácidos 1 a 30), que contiene los tres sitios de fosforilación, y un dominio hidrofóbico (AA 31-52), que está anclado en la membrana del retículo sarcoplásmico cardíaco. Se ha sugerido que parte del dominio hidrofílico está en una configuración helicoidal, y la fosforilación del fosfolambano puede desenrollar o interrumpir esta configuración estructural.10 La evidencia de varios laboratorios indicó la importancia del dominio hidrofílico en la mediación de los efectos reguladores del fosfolambano en la bomba Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco.6111213 En realidad, se ha sugerido que AA 2-18 en fosfolambano interactúa con AA 336-412 y 467-762 en SERCA2 para la modificación funcional.14

También se ha propuesto que el dominio hidrofóbico del fosfolambano tenga una estructura helicoidal. Actualmente no hay evidencia clara de que este dominio interactúe con la bomba de retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2+, aunque varios estudios han sugerido que la porción hidrofóbica del fosfolambano también es importante para mediar los efectos reguladores.1215 Los residuos de cisteína en el dominio transmembrana α-helicoidal proporcionan interacción no covalente entre formas monoméricas y contribuyen a la estabilización de una estructura pentamérica para el fosfolambano.16 El análisis de pentámeros de fosfolambano indicó que la formación de pentámeros era la de un haz helicoidal de bobina enrollada zurda, con un poro de iones cilíndrico.17 Evidencia reciente demostró que una cremallera de leucina estabiliza la asociación pentamérica de fosfolambano y forma un poro iónico central, 18 que puede permitir la transferencia de iones selectivos de Ca2+.19 Sin embargo, actualmente no está claro si el ensamblaje pentamérico es esencial para la regulación funcional del retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2+ ATPasa. Los estudios de expresión en sistemas libres de células han indicado que las formas monoméricas y pentaméricas del fosfolambano son igualmente eficaces para mediar los efectos reguladores en la bomba Ca2+.14

Otra teoría sobre la interacción fosfolambano–Ca2+-ATPasa propuso una asociación dimérica de las proteínas de bomba Ca2+ alrededor de un pentámero de fosfolambano.20 Este modelo, basado en la anisotropía de fosforescencia resuelta en el tiempo, describió una interacción preferencial entre la bomba libre de Ca2+y el fosfolambano desfosforilado. La fosforilación de fosfolambano desestabilizó la interacción y dio lugar a un aumento de la movilidad rotacional de la Ca2+-ATPasa en la membrana del retículo sarcoplásmico cardíaco.20

Regulación de la Contractilidad miocárdica basal por Fosfolambano

El papel del fosfolambano en la regulación de la contractilidad miocárdica basal se ha dilucidado recientemente a través del desarrollo de un ratón con deficiencia de fosfolambano.21 Estos ratones, creados utilizando una metodología de orientación genética en células madre embrionarias murinas, mostraron una función cardíaca hiperdinámica, que incluía un aumento de la función sistólica, un aumento de las tasas de relajación ventricular izquierda21 y un aumento del llenado ventricular.22 Los corazones con deficiencia de fosfolambano no solo se relajaron más rápido que los corazones de tipo salvaje, sino que también exhibieron parámetros inotrópicos mejorados, incluyendo tasas aumentadas de desarrollo de presión, que se evaluaron en preparativos para el trabajo21 e in vivo, utilizando análisis ecocardiográficos.22 Estos hallazgos fueron corroborados por análisis in vitro de cardiomiocitos ventriculares aislados de corazones con deficiencia de fosfolambano, que también mostraron una mejora de las tasas de relengenización, acortamiento y cinética de Ca2+.23 Los parámetros contráctiles mejorados reflejaban alteraciones subcelulares a nivel del retículo sarcoplásmico cardíaco. La afinidad de la bomba de Ca2+ por el Ca2+ aumentó significativamente, y esto se asoció con un aumento del contenido de Ca2+ en el retículo sarcoplásmico cardíaco intraluminal en los corazones con deficiencia de fosfolambano en comparación con los corazones de tipo salvaje.21

La importancia funcional del fosfolambano en la regulación de la contractilidad cardíaca se ha corroborado en estudios con ratones heterocigotos de fosfolambano, que contienen solo un alelo dirigido a fosfolambano.24 Los corazones de estos ratones expresan el 40% de los niveles de fosfolambano presentes en los corazones de ratones de tipo salvaje, y esta expresión reducida de fosfolambano se asocia con aumentos en la afinidad del sistema de transporte de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco para Ca2+ y aumentos en los parámetros contráctiles. Es interesante observar que cuando los niveles de fosfolambano en corazones de tipo salvaje, heterocigotos y deficientes de fosfolambano se compararon con las tasas de contracción y relajación de estos corazones, se observó una estrecha correlación lineal (Fig.1), lo que sugiere un papel prominente para el fosfolambano en la regulación de los parámetros contráctiles basales en el corazón de los mamíferos. Además,dado que los niveles del retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2+ ATPasa no se vieron afectados en estos corazones genéticamente alterados25, estos datos indican que las alteraciones en los niveles de fosfolambano, que pueden reflejar alteraciones en la estequiometría relativa del fosfolambano al retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2+ ATPasa, se asocian con alteraciones paralelas en los parámetros contráctiles cardíacos. Sin embargo, la estequiometría funcional del fosfolambán al retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2+ ATPasa no se conoce actualmente. Los estudios in vitro han notificado valores que varían entre 1:5 y 5:1 para fosfolambano / SERCA2. Estudios in vivo con ratones transgénicos, que sobreexpresan fosfolambano específicamente en el corazón, sugirieron que la» estequiometría funcional » de fosfolambano/SERCA2 es inferior a 1:1 en membranas de retículo sarcoplásmico cardíaco nativo.26 Los niveles de proteína de fosfolambano en los corazones de estos ratones transgénicos fueron dos veces más altos en comparación con los corazones de tipo salvaje, y el aumento de la expresión de fosfolambano dio lugar a un aumento de la inhibición de la afinidad de Ca2+-ATPasa por Ca2+, sin ningún efecto sobre la Vmáx de esta enzima.26 Además, cuando se trazaron los niveles relativos de fosfolambano a la ATPasa Ca2 + del retículo sarcoplásmico cardíaco frente a los valores de CE50 de la Ca2+-ATPasa para Ca2+ en corazones con sobreexpresión de fosfolambano, tipo salvaje, heterocigoto de fosfolambano y deficientes de fosfolambano, se observó una estrecha correlación lineal (Fig 2), lo que indica que el fosfolambano sobreexpresión en los corazones transgénicos estaba acoplado funcionalmente a la Ca2+-ATPasa. La disminución de la afinidad de la Ca2+-ATPasa por Ca2+ en los corazones de sobreexpresión de fosfolambano se asoció con disminuciones en los parámetros contráctiles y depresión de los transitorios de Ca2+ en miocitos cardíacos aislados en comparación con los miocitos de corazones de tipo salvaje.26 Los análisis ecocardiográficos de corazones de estos ratones transgénicos demostraron un acortamiento fraccional y circunferencial significativamente suprimido en comparación con corazones de ratones silvestres.26 Tomados en conjunto, estos estudios en ratones genéticamente alterados indican que el fosfolambano es un potente represor de los parámetros de contracción y relajación en el corazón de los mamíferos.

El papel del Fosfolambano en la Respuesta β-Adrenérgica miocárdica

Los estudios en corazones latentes aislados y miocitos cardíacos han demostrado que la administración de catecolaminas resulta en la fosforilación del fosfolambano en el retículo sarcoplásmico cardíaco, el fosfolemo en las membranas sarcolémicas y la proteína troponina I y C en las miofibrillas. Sin embargo, las tasas de reacciones de fosforilación/desfosforilación en el fosfolambano parecen ser más rápidas que las de las otras fosfoproteínas, y se ha sugerido que el fosfolambano es un mediador prominente de las respuestas β-adrenérgicas en el corazón de los mamíferos. La fosforilación del fosfolambano, en respuesta al aumento de los niveles de AMPc durante la administración de agonistas β, se acompaña de un aumento de la actividad del sistema de transporte Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco y de un aumento de las tasas de relajación cardíaca.272829 El aumento de las tasas de captación de Ca2+ lleva a un aumento de los niveles de secuestro de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco, que están disponibles para contracciones posteriores, lo que lleva a un aumento de la fuerza contráctil. Sin embargo, el fosfolambano no solo es fosforilado por la proteína quinasa dependiente de cAMP en la serina 16, sino también por la proteína quinasa Ca2+-calmodulina en la treonina 17,89 y la contribución relativa de cada fosforilación en los efectos inotrópicos y lusitrópicos de los agonistas β no se conoce actualmente.

El papel funcional del fosfolambano en la vía de señalización β-adrenérgica se ha dilucidado recientemente utilizando el ratón deficiente en fosfolambano. Los estudios in vitro en miocitos aislados y preparados cardíacos de estos ratones indicaron una atenuación significativa de los efectos inotrópicos y lusitrópicos del isoproterenol en comparación con los preparados de tipo silvestre.2123 Además, estudios in vivo utilizando análisis ecocardiográficos de corazones ablados con fosfolambano demostraron que los efectos estimulantes β-adrenérgicos también se atenuaron en el animal intacto.22 Por lo tanto, aunque el fosfolambano no es la única proteína involucrada en la transducción de la señalización β-adrenérgica cardíaca, la evidencia experimental hasta la fecha indica que es una proteína importante. La función del fosfolambano durante la estimulación con catecolaminas del corazón sugiere un papel para esta proteína como un «mecanismo de freno» interno, que permite una reacción miocárdica rápida, de modo que cuando se libera adrenalina en una situación de «lucha o huida», el «freno» del fosfolambano se alivia, lo que permite un aumento rápido de la contracción y relajación cardíacas.

Regulación de la expresión de Fosfolambano

El fosfolambano es el producto de un solo gen, y ha sido clonado de varias especies, incluyendo el cerdo, el pollo, el ratón y el humano. Existe > una homología del 96% entre las regiones codificantes del gen fosfolambano entre estas especies, y no se han detectado isoformas de fosfolambano hasta la fecha.30 El gen fosfolambano se ha mapeado al cromosoma 6 humano.31 Estudios en ratones han demostrado que, con respecto al sistema circulatorio, el fosfolambano se expresa de manera diferente, variando desde niveles altos de expresión en el músculo ventricular, hasta niveles intermedios en los músculos miocárdicos auriculares y pulmonares, y hasta niveles bajos pero funcionalmente significativos de expresión en el músculo liso aórtico. Los niveles diferenciales de expresión de fosfolambano en los compartimentos ventricular y auricular parecían correlacionarse con diferencias en los parámetros contráctiles de estos músculos.32

La expresión de fosfolambano también se ha demostrado que está regulada durante el desarrollo y el envejecimiento. Se han observado aumentos en la expresión de fosfolambano a lo largo del desarrollo cardíaco en ratones, pollos, ratas y conejos.31323334 Además, se ha sugerido que los decrementos en la fosforilación de fosfolambano en el corazón de rata envejecido están asociados con la disminución de las respuestas contráctiles de estos corazones a la estimulación con catecolaminas.

La expresión de fosfolambano miocárdico también se ha demostrado que está regulada por el estado tiroideo tanto en la rata como en el conejo.3435 Durante el hipotiroidismo, los niveles de ARNm de fosfolambano no se modificaron en la aurícula y el ventrículo de conejo, mientras que los niveles de proteína de fosfolambano aumentaron en corazones de rata. Estos niveles elevados de fosfolambano en el corazón de rata se asociaron con una disminución de las tasas de captación de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco, consistente con un aumento de la inhibición de la bomba de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco y una disminución de la contractilidad.Se observaron efectos reguladores opuestos para la expresión de fosfolambano durante el hipertiroidismo.El hipertiroidismo se asoció con una disminución de los niveles de ARNm de fosfolambano en aurículas y ventrículos de conejo y una disminución de los niveles de proteína de fosfolambano en corazones de rata. Las disminuciones en los niveles de fosfolambano se reflejaron en un aumento de las tasas de captación de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco, consistente con la desinhibición de la bomba de Ca2+ y la mejora de los parámetros contráctiles.

Investigaciones recientes de alteraciones en la expresión génica, que ocurren durante la insuficiencia cardíaca, indicaron que las alteraciones en la relación relativa de fosfolambano a la ATPasa SR Ca2+ pueden ser un sello distintivo de esta enfermedad.363738 Sin embargo, existe cierta discrepancia en la literatura en cuanto a cómo se altera la expresión de fosfolambano durante la insuficiencia miocárdica. Algunos estudios realizados en corazones humanos fallidos han demostrado reducciones en el ARNm de fosfolambán37 o en la proteína de fosfolambán363738,mientras que otros estudios no observaron alteraciones aparentes en los niveles de fosfolambán de corazones humanos fallidos.39404142 Aunque sigue habiendo controversia con respecto a las alteraciones del fosfolambano durante la insuficiencia cardíaca, es evidente que las alteraciones intracelulares, que se asocian con la represión de la contractilidad cardíaca, sugieren un papel del fosfolambano en la etiología de la enfermedad.

Resumen

Nuestra comprensión del papel del fosfolambano en la fisiología cardíaca ha evolucionado en las últimas dos décadas hasta el punto de que ahora se entiende que esta proteína es un represor crítico de la contractilidad miocárdica. El fosfolambano, a través de sus efectos inhibidores sobre la afinidad de la bomba de retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2+ por Ca2+, reprime tanto las tasas de relajación como de contracción en el corazón de los mamíferos. Estos efectos inhibitorios se pueden aliviar a través de (1) fosforilación de fosfolambano, (2) regulación a la baja de la expresión génica de fosfolambano, y (3) interrupción de la interacción fosfolambano–Ca2+-ATPasa. Por lo tanto, los abordajes genéticos y las intervenciones farmacológicas, diseñados para aliviar la acción inhibitoria del fosfolambano sobre la bomba del retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2+ y la relajación miocárdica, pueden resultar valiosos para revertir los efectos de varias enfermedades en el corazón de los mamíferos. Tales intervenciones podrían diseñarse para inhibir la fosfolamban fosfatasa, estabilizar el estado fosforilado de fosfolamban, interrumpir la interacción fosfolamban-Ca2+-ATPasa, disminuir la transcripción de fosfolamban o interrumpir la estabilidad del ARNm de fosfolamban. El desarrollo de tales estrategias terapéuticas para atacar el fosfolambano será un objetivo futuro importante para la mejora clínica de la contractilidad en el corazón fallido.

Figura 1.

Figura 1. Gráfico que muestra las relaciones entre los cocientes relativos de fosfolambano (PLB)/Ca2+-ATPasa para los diversos modelos de expresión de PLB murino y los parámetros contráctiles cardíacos. Los parámetros contráctiles se midieron para corazones de ratón en preparaciones cardíacas aisladas para la realización de trabajo. Las relaciones entre la relación relativa PLB/Ca2+-ATPasa y el tiempo hasta el desarrollo de la presión máxima (TPP, •) o el tiempo hasta la media relajación de la presión desarrollada (RT50, ▴) se dan para corazones PLB-knockout (KO), PLB-heterocigotos (HET) y de tipo salvaje (WT). La estrecha correlación lineal entre la relación PLB/Ca2+-ATPasa y los parámetros de tiempo de contracción y relajación se representan mediante líneas de regresión.

Figura 2.

Figura 2. Gráfico que muestra la relación entre los cocientes relativos de fosfolambano (PLB)/Ca2+-ATPasa y la CE50 para la captación de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco en los diversos modelos murinos. La relación se representa para preparaciones de homogeneizado cardíaco de ratones PLB-knockout (KO), PLB-heterocigotos (HET), de tipo salvaje (WT) y PLB-sobreexpresión (OE). La estrecha correlación lineal entre la relación PLB/Ca2+-ATPasa y la captación de Ca2+ del retículo sarcoplásmico cardíaco viene dada por la línea de regresión.

Este estudio fue apoyado por las becas HL-26057, HL-52318, HL-22619 (Dr. Kranias) y HL-08901 (Dr. Koss) de los Institutos Nacionales de Salud.

Notas a pie de página

Correspondencia a la Dra. Evangelia G. Kranias, Departamento de Farmacología & Biofísica celular, Facultad de Medicina de la Universidad de Cincinnati, 231 Bethesda Ave, Cincinnati, OH 45267-0576.

  • 1 Tada M, Kirchberger MA, Repke DI, Katz AM. La estimulación del transporte de calcio en el retículo sarcoplásmico cardíaco por adenosina 3′:proteína quinasa dependiente de 5 ‘ – monofosfato. J Biol Chem.1974; 249:6174-6180.MedlineGoogle Scholar
  • 2 Simmerman HK, Collins JH, Theibert JL, Wegener AD, Jones LR. Análisis de secuencias de fosfolambano: identificación de sitios de fosforilación y dos dominios estructurales principales. J Biol Chem.1986; 261:13333-13341.3 Raeymaekers L, Hofmann F, Casteels R. Fosforilatos cíclicos de proteína quinasa dependiente de GMP fosfolambano en retículo sarcoplásmico aislado de músculo cardíaco y liso. Biochem J. 1988; 252: 269-273.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 4 Hicks MJ, Shigekawa M, Katz AM. Mecanismo por el cual la adenosina cíclica 3’5′-proteína quinasa monofosfato–dependiente estimula el transporte de calcio en el retículo sarcoplásmico cardíaco. Circ Res. 1979; 44: 384-391.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 5 Kranias POR EJEMPLO. Regulación del transporte de Ca2 + por fosforilación cíclica del retículo sarcoplásmico cardíaco dependiente de 3′,5’y calcio-calmodulina. Biochim Biophys Acta. 1985:844:193-199.Google Scholar
  • 6 Kim HW, Steenaart NA, Ferguson DG, Kranias EG. Reconstitución funcional del retículo sarcoplásmico cardíaco Ca2 + – ATPasa con fosfolambano en vesículas fosfolípidas. J Biol Chem.1990; 265:1702-1709.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 7 Kranias POR EJEMPLO. Regulación del transporte de calcio por la actividad de la proteína fosfatasa asociada al retículo sarcoplásmico cardíaco. J Biol Chem.1985; 260:11006-11010.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 8 Wegener AD, Simmerman HK, Lindemann JP, Jones LR. Fosforilación de fosfolambano en ventrículos intactos: fosforilación de serina 16 y treonina 17 en respuesta a la estimulación beta-adrenérgica. J Biol Chem.1989; 264:11468-11474.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 9 Talosi L, Edes I, Kranias EG. Mecanismos intracelulares que median la reversión de la estimulación beta-adrenérgica en corazones latentes intactos. Am J Physiol.1993; 264: H791-H797.MedlineGoogle Scholar
  • 10 Mortishire-Smith RJ, Pitzenberger SM, Burke CJ, Middaugh CR, Garsky VM, Johnson RG. Estructura de solución del dominio citoplasmático del fosfolambano: la fosforilación conduce a una perturbación local en la estructura secundaria. Bioquímica.1995; 34:7603-7613.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 11 Hughes G, East JM, Lee AG. El dominio hidrofílico del fosfolambano inhibe el paso de transporte Ca2+ de la Ca2 + – ATPasa. Biochem J. 1994; 303: 511-516.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 12 Sasaki T, Inui M, Kimura Y, Kuzuya T, Tada M. Mecanismo molecular de regulación de la ATPasa de la bomba de Ca2 + por fosfolambano en el retículo sarcoplásmico cardíaco: efectos de los péptidos de fosfolambano sintético en la ATPasa de la bomba de Ca2+. J Biol Chem.1992; 267:1674-1679.MedlineGoogle Scholar
  • 13 Suzuki T, Wang JH. Estimulación de la bomba de retículo sacroplásmico cardíaco bovino Ca2+ y bloqueo de la fosforilación y desfosforilación de fosfolambano por un anticuerpo monoclonal de fosfolambano. J Biol Chem.1986; 261:7018-7023.MedlineGoogle Scholar
  • 14 Toyofuku T, Kurzydlowski K, Tada M, MacLennan D. Los aminoácidos Glu2 a Ile18 en el dominio citoplasmático del fosfolambano son esenciales para la asociación funcional con la Ca2+-ATPasa del retículo sarcoplasmático. J Biol Chem.1994; 269:3088-3094.MedlineGoogle Scholar
  • 15 Jones LR, Field LJ. Los residuos 2-25 de fosfolambano son insuficientes para inhibir la ATPasa transportadora de Ca2 + del retículo sarcoplásmico cardíaco. J Biol Chem.1993; 268:11486-11488.MedlineGoogle Scholar
  • 16 Wegener AD, Simmerman HK, Liepnieks J, Jones LR. Escisión proteolítica de fosfolambano purificado a partir de vesículas de retículo sarcoplásmico cardíaco canino: generación de un modelo de estructura de fosfolambano de baja resolución. J Biol Chem.1986; 261:5154-5159.MedlineGoogle Scholar
  • 17 Arkin IT, Adams PD, MacKenzie KR, Lemmon MA, Brunger AT, Engelman DM. Organización estructural de las hélices alfa transmembranas pentáméricas de fosfolambano, un canal iónico cardíaco. EMBO J. 1994; 13: 4757-4764.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 18 Simmerman HKB, Kobayashi YM, Autry JM, Jones LR. Una cremallera de leucina estabiliza el dominio de membrana pentamérica del fosfolambano y forma una estructura de poros en espiral. J Biol Chem.1996; 271:5941-5946.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 19 Kovacs RJ, Nelson MT, Simmerman HKB, Jones LR. El fosfolambano forma canales selectivos de Ca2 + en bicapas lipídicas. J Biol Chem.1988; 263:18364-18368.MedlineGoogle Scholar
  • 20 Voss J, Jones LR, Thomas DD. Mecanismo físico de regulación de la bomba de calcio en el corazón. Biophys J. 1994; 67: 190-196.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 21 Luo W, Grupp IL, Harrer J, Ponniah S, Grupp G, Duffy JJ, Doetschman T, Kranias EG. La ablación dirigida del gen del fosfolambano se asocia con una contractilidad miocárdica notablemente mejorada y pérdida de estimulación con agonistas β. Circ Res. 1994; 75: 401-409.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 22 Hoit BD, Khoury SF, Kranias EG, Ball N, Walsh RA. Detección ecocardiográfica in vivo de la función ventricular izquierda mejorada en ratones dirigidos a genes con deficiencia de fosfolambano. Circ Res. 1995; 77: 632-637.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 23 Wolska BM, Stojanovic MO, Luo W, Kranias EG, Solaro RJ. Efecto de la ablación de fosfolambano en la dinámica de la contracción de miocitos cardíacos y calcio intracelular en condiciones basales y durante la estimulación β-adrenérgica. Am J Physiol.1996; 271:391-397.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 24 Luo W, Wolska BM, Grupp IL, Harrer JM, Haghighi K, Ferguson DG, Slack JP, Grupp G, Doetschman T, Solaro RJ, Kranias EG. Efectos de la dosificación del gen fosfolambano en el corazón de los mamíferos. Circ Res. 1996; 78: 839-847.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 25 Chu G, Luo W, Matlib MA, Sweet WE, Ferguson DG, Boivin GP, Slack JP, Moravec CS, Grupp IL, Kranias EG. Mecanismos compensatorios en corazones de ratón noqueados con fosfolambano. Biophys J. 1996; 70: A56. Abstracto.26 Kadambi VJ, Ponniah S, Harrer J, Hoit B, Dorn GW, Walsh RA, Kranias EG. Cardiac-specific overexpression of phospholamban alters calcium kinetics and resultant cardiomyocyte mechanics in transgenic mice. J Clin Invest.1996; 97:533-539.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 27 Lindemann JP, Jones LR, Hathaway DR, Henry BG, Watanabe AM. β-Adrenergic stimulation of phospholamban phosphorylation and Ca2+-ATPase activity in guinea pig ventricles. J Biol Chem.1983; 258:464-471.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 28 Mundina de Weilenmann C, Vittone L, deCingolani G, Mattiazi A. Dissociation between contraction and relaxation: the possible role of phospholamban phosphorylation. Basic Res Cardiol.1987; 82:507-516.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 29 Garvey JL, Kranias EG, Solaro RJ. Phosphorylation of C-protein, troponin I and phospholamban in isolated rabbit hearts. Biochem J.1988; 249:709-714.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 30 Ganim JR, Luo W, Ponniah S, Grupp IL, Kim HW, Ferguson DG, Kadambi V, Neumann JC, Doetschman T, Kranias EG. Mouse phospholamban gene expression during development in vivo and in vitro. Circ Res.1992; 71:1021-1030.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 31 Fujii J, Zarain-Herzberg A, Willard HF, Tada M, MacLennan DH. Estructura del gen fosfolambano de conejo, clonación del ADNc humano y asignación del gen al cromosoma 6. J Biol Chem.1991; 266:11669-11675.MedlineGoogle Scholar
  • 32 Koss KL, Ponniah S, Jones WK, Grupp IL, Kranias EG. Expresión génica diferencial de fosfolambano en compartimentos cardíacos murinos: análisis moleculares y fisiológicos. Circ Res. 1995; 77: 342-353.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 33 Jiang MT, Moffat MP, Narayanan N. Age-related alterations in the phosphorylation of sarcoplasmic reticulum and myofibrillar proteins and diminished contractile response to isoproterenol in intact rat ventricle. Circ Res.1993; 72:102-111.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 34 Kiss E, Jakab G, Kranias EG, Edes I. Thyroid hormone–induced alterations in phospholamban protein expression: regulatory effects on sarcoplasmic reticulum Ca2+-transport and myocardial relaxation. Circ Res.1994; 75:245-251.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 35 Arai M, Otsu K, MacLennan DH, Alpert NR, Periasamy M. Efecto de la hormona tiroidea en la expresión de ARNm que codifica proteínas del retículo sarcoplasmático. Circ Res. 1991; 69: 266-276.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 36 Arai M, Alpert NR, MacLennan DH, Barton P, Periasamy M. Alteraciones en la expresión génica del retículo sarcoplasmático en la insuficiencia cardíaca humana: un posible mecanismo de alteraciones en las propiedades sistólicas y diastólicas del miocardio fallido. Circ Res. 1993; 72: 463-469.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 37 Feldman AM, Ray PE, Silan CM, Mercer JA, Minobe W, Bristow MR. Expresión génica selectiva en el corazón humano fallido: cuantificación de los niveles de ARN mensajero en estado estacionario en biopsias endomiocárdicas utilizando la reacción en cadena de la polimerasa. Circulación.1991; 83:1866-1872.38 Meyer M, Schillinger W, Pieske B, Holubarsch C, Heilmann C, Posival H, Kuwajima G, Mikoshiba K, Just H, Hasenfuss G. Alteraciones de las proteínas del retículo sarcoplasmático en la cardiomiopatía dilatada humana fallida. Circulación.1995; 92:778-784.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 39 Movsesian MA, Karimi M, Green K, Jones LR. Ca2+ transporting ATPase, phospholamban, and calsequestrin levels in nonfailing and failing human myocardium. Circulation.1994; 90:653-657.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 40 Linck B, Boknik P, Schenhagen T, Muller FU, Neumann J, Nose M, Jones LR, Schmitz W, Scholtz H. Messenger RNA expression and immunologic quantification of phospholamban and SR Ca2+-ATPase in failing and nonfailing human hearts. Cardiovasc Res.1996; 31:625-632.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 41 Böhm M, Reiger B, Schwinger RH, Erdmann E. Concentraciones de AMPc, actividad de proteína quinasa dependiente de AMPc y fosfolambano en miocardio no fallido y fallido. Cardiovasc Res. 1994; 28: 1713-1719.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 42 Schwinger RHG, Böhm M, Schmidt U, Karczewski P, Bavendiek U, Flesch M, Krause E-G, Erdmann E. Niveles de proteína inalterados de SERCA II y fosfolambano, pero reducción de la captación de Ca2+ y de la actividad de Ca2+-ATPasa del retículo sarcoplásmico cardíaco en pacientes con miocardiopatía dilatada en comparación con pacientes con corazones no deslizantes. Circulación.1995; 92:3220-3228.Escuela CrossrefMedlineGoogle