Arthur Atchabahian, Catherine Vandepitte, Ana M. Lopez i Jui-an Lin

fakty

• wskazania: operacja stopy i stawu skokowego, amputacja pod kolanem, analgezja po operacji kolana z udziałem przedziału tylnego (ryc.> podejście przezglutealne: poprzeczne na tylnym pośladku, między guzowatością kulszową a krętarzem większym
• podejście podglutealne: poprzeczne na zgięciu pośladkowym
• inne podejścia (np. parasacral, lateral) zostały opisane, ale nie będą tutaj szczegółowe.

cel: znieczulenie miejscowe w obrębie osłonki nerwu kulszowego

znieczulenie miejscowe: 10-20 mL

część I: Przednie podejście

Uwagi ogólne

przednie podejście do bloku nerwu kulszowego może być przydatne u pacjentów, którzy nie mogą być ustawione w pozycji bocznej z powodu bólu, urazu, obecności zewnętrznych urządzeń mocujących, które zakłócają pozycjonowanie lub innych problemów. USG-guided podejście może zmniejszyć ryzyko nakłucia tętnicy udowej w porównaniu z podejściem landmark oparte.
rzeczywiste skanowanie i wprowadzenie igły są wykonywane na przednio-przyśrodkowym aspekcie bliższego uda, a nie na przedniej powierzchni i mogą wymagać lekkiego uprowadzenia i zewnętrznego obrotu uda. Blok ten nie jest dobrze przystosowany do wprowadzania cewnika, ponieważ duża igła musi przemierzać kilka mięśni (dyskomfort podczas zabiegu i ryzyko krwiaka), jest to niewygodne położenie cewnika (przyśrodkowe uda), a wprowadzenie cewnika pod kątem prostopadłym do nerwu kulszowego jest trudne.

anatomia ultrasonograficzna

nerw kulszowy jest zobrazowany w przybliżeniu na poziomie krętarza małego. W tym miejscu zakrzywiony przetwornik umieszczony nad przednio-przyśrodkowym aspektem uda ujawni muskulaturę wszystkich trzech przedziałów powięziowych uda: przedniego, przyśrodkowego i tylnego (ryc. 2 i 3). Pod mięśniem Sartoriusa znajduje się tętnica udowa, a głęboka i przyśrodkowa do tego naczynia tętnica głęboka uda. Oba można zidentyfikować za pomocą Dopplera kolorów dla orientacji. Kość udowa jest postrzegana jako hiperechoiczna obręcz z odpowiadającym jej cieniem pod vastus intermedius.

przyśrodkowy do kości udowej jest mięsień przywodzicielski, przedni do mięśni ścięgnistych. Nerw kulszowy jest wizualizowany jako hiperechoiczna owalna struktura umieszczona między tymi dwoma mięśniami. Nerw jest zazwyczaj wizualizowane na głębokości 6-8 cm (patrz rysunek 3).

aby uzyskać bardziej kompleksowy przegląd rozkładu nerwu kulszowego, patrz Anatomia znieczulenia czynnościowego

rozkład znieczulenia

blok nerwu kulszowego powoduje znieczulenie tylnego aspektu kolana, mięśni ścięgien podkolanowych i całej kończyny dolnej poniżej kolana, zarówno blokady ruchowej, jak i czuciowej, z wyjątkiem skóry na przyśrodkowej nodze i stopie (dostarczanej przez nerw odpiszczelowy) (ryc. 1). Skóra tylnego aspektu uda jest zaopatrywana przez nerw skórny tylny kości udowej, który odchyla się od nerwu kulszowego bliższego do poziomu podejścia przedniego i dlatego nie jest zablokowany. O ile nacięcie chirurgiczne nie obejmuje tylnego uda, brak znieczulenia w jego dystrybucji ma niewielkie znaczenie kliniczne, ponieważ ból spowodowany na przykład opaską uciskową uda wynika bardziej z niedokrwienia mięśni niż nacisku na skórę.

sprzęt

sprzęt zalecany do blokowania nerwu kulszowego przy użyciu podejścia przedniego jest następujący:

• urządzenie ultradźwiękowe z zakrzywionym (fazowanym układem) przetwornikiem (2-8 MHz), sterylnym rękawem i żelem
• Standardowa taca na blok nerwów
• jedna strzykawka 20 mL zawierająca znieczulenie miejscowe
• a 100 lub 120 mm, 21-gauge, short – bevel, izolowana igła stymulująca
• stymulator nerwów obwodowych
• sterylne rękawice
• Monitor Ciśnienia iniekcji
• /li>

Dowiedz się więcej o sprzęcie do blokowania nerwów obwodowych

punkty orientacyjne i pozycjonowanie pacjenta

przednie podejście do bloku nerwu kulszowego jest wykonywane z pacjentem w pozycji leżącej na plecach. Biodro jest uprowadzane w celu ułatwienia umieszczenia przetwornika i igły (ryc. 4 i 5). Jeśli jest to możliwe, biodro i kolano powinny być nieco zgięte, aby ułatwić ekspozycję. Jeśli stymulacja nerwów ma być stosowana w tym samym czasie (jest to zalecane), konieczne jest narażenie łydki i stopy w celu zaobserwowania reakcji motorycznych. W obu przypadkach przydatne jest odsłonięcie całego uda, aby docenić odległość od pachwiny do kolana.

cel

celem jest umieszczenie końcówki igły bezpośrednio obok nerwu kulszowego, między mięśniem przywodzącym i mięśniem dwugłowym kości udowej.

technika

gdy pacjent jest we właściwej pozycji, skóra jest dezynfekowana, a przetwornik umieszczony w celu identyfikacji nerwu kulszowego. Jeśli nerw nie jest od razu widoczny, przesuwanie i przechylanie przetwornika proksymalnie lub dystalnie może być przydatne do poprawy kontrastu i wyprowadzenia nerwu „z tła” z mięśni. Jeśli pacjent jest w stanie dorsiflex i / lub podeszwy flex kostki, ten manewr często powoduje, że nerw do poruszania się w płaszczyźnie międzymięśniowej, ułatwiając identyfikację. Igłę wprowadza się w płaszczyznę od strony przyśrodkowej uda lub poza płaszczyznę i wysuwa w kierunku nerwu kulszowego (patrz rycina 5).

podejście w płaszczyźnie może okazać się mniej praktyczne ze względu na stromy kąt igły i zastosowanie zakrzywionej (nieliniowej) sondy. Jeśli stosuje się stymulację nerwów (1,0 mA, 0.1 ms), kontakt końcówki igły z nerwem kulszowym jest zwykle związany z reakcją motoryczną łydki lub stopy. Gdy końcówka igły znajduje się we właściwej pozycji, wstrzykuje się 1-2 mL miejscowego środka znieczulającego, aby potwierdzić odpowiednią dystrybucję zastrzyku. Taki zastrzyk pomaga wyznaczyć nerw kulszowy w tunelu mięśniowym i powinien wypierać nerw kulszowy z dala od igły. Niewłaściwe rozprzestrzenianie się znieczulenia miejscowego lub przemieszczenie nerwu może wymagać regulacji położenia końcówki igły.

u dorosłego pacjenta zwykle wystarcza 10-15 mL znieczulenia miejscowego do skutecznej blokady (ryc. 6). Chociaż pojedyncze wstrzyknięcie takiej objętości miejscowego środka znieczulającego wystarczy, korzystne może być wstrzyknięcie dwóch do trzech mniejszych porcji w różnych miejscach, aby zapewnić rozprzestrzenianie się miejscowego środka znieczulającego wokół nerwu kulszowego.

dynamika bloku i postępowanie okołooperacyjne są podobne do opisanych w sekcji technika stymulatora nerwów.

Czytaj dalej blok kulszowy podkolanowy prowadzony USG.

sugerowane odczyty

• Bruhn J, van Geffen GJ, Gielen MJ, Scheffer Gj: Wizualizacja przebiegu nerwu kulszowego u dorosłych ochotników za pomocą ultrasonografii. Acta Anestezjol Scand 2008;52: 1298-1302.
• Chan VW, Nova H, Abbas S, McCartney CJ, Perlas a, Xu DQ: badanie USG i lokalizacja nerwu kulszowego: badanie ochotników. Anestezjologia 2006;104:309-314.
• Chantzi C, Saranteas T, Zogogiannis J, Alevizou N, Dimitriou V: Badanie ultrasonograficzne nerwu kulszowego przedniego uda u pacjentów otyłych. Acta Anestezjol Scand 2007; 51: 132.
• Danelli G, Ghisi D, Ortu a: technika ultrasonografii i znieczulenia regionalnego: czy naprawdę istnieją ograniczenia techniczne w zakresie wskazówek ultrasonograficznych w blokach nerwu kulszowego? Reg Anesth Pain Med 2008;33: 281-282.
• Dolan J: Ultradźwiękowy blok nerwu kulszowego przedniego w proksymalnym udzie: podejście w płaszczyźnie poprawiające widok igły i szanujące płaszczyzny powięziowe. Br J Anaesth 2013;110: 319-320.
• Domingo-Triado V, Selfa S, Martinez F, et al: Wytyczne ultrasonograficzne dla bocznego bloku nerwu kulszowego: prospektywne, porównawcze, randomizowane badanie. Anesth Analg 2007;104: 1270-1274.
• Fredrickson MJ, Kilfoyle Dh: Neurological complication analysis of 1000 ultrasound guided peripheral nerve blocks for elective orthopaedic surgery: a prospektywne badanie. Anestezjologia 2009;64: 836-844.
• Gnaho a, Eyrieux S, Gentili m: zatrzymanie akcji serca podczas bloku nerwu kulszowego kierowanego ultradźwiękami połączonego ze stymulacją nerwów. Reg Anesth Pain Med 2009;34: 278.
• Gray AT, Collins AB, Schafhalter-Zoppoth I: Blok nerwu kulszowego u dziecka: podejście sonograficzne. Anesth Analg 2003; 97: 1300-1302.
• Hamilton PD, Pearce CJ, Pinney SJ, Calder JD: Sciatic nerve blockade: a survey of orthopaedic foot and ankle specialists in North America and the United Kingdom. Foot Ankle Int 2009; 30: 1196-1201.
• Latzke D, Marhofer P, Zeitlinger m, et al: Minimalne wielkości znieczulenia miejscowego dla bloku nerwu kulszowego: ocena ED 99 u ochotników. Br J Anaesth 2010;104: 239-244.
• Oberndorfer U, Marhofer P, Bosenberg A, et al: Wytyczne ultrasonograficzne dla blokad nerwu kulszowego i udowego u dzieci. Br J Anaesth 2007; 98: 797-801.
• Ota J, Sakura S, Hara K, Saito Y: USG-guided anterior approach to rwa kulszowa Block: A comparison with the posterior approach. Anesth Analg 2009;108: 660-665.
• Panhuizen IF, Snoeck mm. van de Blokkade N: Ischiadicus via echogeleide anterieure benadering . Ned Tijdschr Geneeskd 2011; 155: A2372.
• Pham Dang C, Gourand D: usg nerwu kulszowego w podejściu bocznym śródmięśniowym. Reg Anesth Pain Med 2009;34: 281-282.
• Saranteas T: Ograniczenia w technikach obrazowania ultrasonograficznego w znieczuleniu: otyłość i zanik mięśni? Anesth Analg 2009;109: 993-994.
• Saranteas T, Chantzi C, Paraskeuopoulos T, et al: obrazowanie w znieczuleniu: rola sondy ultradźwiękowej z matrycą sektorową 4 MHz do 7 MHz w identyfikacji nerwu kulszowego w różnych lokalizacjach anatomicznych. Reg Anesth Pain Med 2007;32:537-538.
• Saranteas T, Chantzi C, Zogogiannis J, et al: boczne badanie nerwu kulszowego i lokalizacja na poziomie połowy kości udowej: badanie obrazowe za pomocą ultradźwięków. Acta Anestezjol Scand 2007;51: 387-388.
• Saranteas T, Kostopanagiotou G, Paraskeuopoulos T, Vamvasakis E, Chantzi C, Anagnostopoulou s: badanie ultrasonograficzne nerwu kulszowego w dwóch różnych miejscach w bocznym udzie: nowe podejście identyfikacji potwierdzone preparatami anatomicznymi. Acta Anestezjol Scand 2007; 51: 780-781.
• strony BD, Neal JM, Chan V: USG w znieczuleniu regionalnym: gdzie należy ustawić „ostrość”? Reg Anesth Pain Med 2009;34:531-533.
• Tsui BC, Dillane D, Pillay J, Ramji AK, Walji AH: Obrazowanie USG kadaweryczne do treningu w blokach nerwów obwodowych sterowanych ultradźwiękami: kończyna dolna. Can J Anaesth 2007; 54: 475-480.
• Tsui BC, Ozelsel TJ: ultradźwiękowy blok nerwu kulszowego przedniego z zastosowaniem podejścia podłużnego: „expanding the view.”Reg Anesth Pain Med 2008;33: 275-276.
• van Geffen GJ, Bruhn J, Gielen m: ciągłe blokady nerwu kulszowego prowadzone ultradźwiękami u dwójki dzieci z wadami rozwojowymi żylnymi kończyny dolnej. Can J Anaesth 2007; 54: 952-953.

Część II: Podejście tylne

Uwagi ogólne

przy podejściu przezszkliwnym nerw kulszowy zbliża się głęboko do mięśnia pośladkowego maksymalnego, gdzie jest identyfikowany między dwoma punktami ostrymi (guzowatość kulszowa i krętarz większy). Aby uzyskać widok nerwu kulszowego i struktur kostnych na tym poziomie, zwykle potrzebna jest sonda krzywoliniowa.
przy podejściu podśluzówkowym nerw znajduje się tuż poniżej poziomu zgięcia pośladkowego, gdzie nerw leży bardziej powierzchownie i można go zobrazować nawet sondą liniową. Preferowanie jednego podejścia w stosunku do drugiego opiera się na cechach anatomicznych pacjenta i osobistych preferencjach operatora. Podejście podśluzówkowe może być lepszym wyborem dla większości pacjentów i wskazań, w tym pacjentów otyłych.

anatomia ultrasonograficzna

na poziomie transglutealnym nerw kulszowy jest wizualizowany w krótkiej osi między dwoma hyperechoicznymi wypukłościami kości kulszowej guzowatości i krętarza większego kości udowej (ryc. 7 i 8). Mięsień pośladkowy jest postrzegany jako najbardziej powierzchowna warstwa mięśniowa łącząca dwie struktury kostne, Zwykle o grubości kilku centymetrów. Nerw kulszowy znajduje się bezpośrednio głęboko do mięśnia pośladkowego maksymalnego i powierzchownie do mięśnia czworogłowego kości udowej. Często jest nieco bliżej guzowatości kulszowej niż do większego krętarza. W tym miejscu w udzie jest postrzegana jako owalna lub mniej więcej trójkątna struktura hiperechoiczna. Na poziomie podśluzówkowym nerw kulszowy znajduje się między długą głową mięśnia dwugłowego uda a tylną powierzchnią przywodziciela.

rozkład znieczulenia

Blokada nerwu kulszowego powoduje znieczulenie całej kończyny dolnej poniżej kolana (zarówno blokady ruchowej, jak i czuciowej), z wyjątkiem skóry na przyśrodkowej nodze i stopie, która jest unerwiona przez nerw odpiszczelowy. Zarówno transgluteal i subgluteal podejścia zapewniają blokadę silnika mięśni ścięgna ścięgna. Skóra tylnego aspektu uda, dostarczana przez nerw tylno-skórny kości udowej, nie jest przez podśluzówkę, a gdy jest to wskazane, nerw skórny tylnej kości udowej można znieczulać oddzielnie. Aby uzyskać bardziej kompleksowy przegląd dystrybucji nerwu kulszowego, zobacz funkcjonalne znieczulenie Regionalne Anatomia.

sprzęt

sprzęt zalecany do blokowania nerwu kulszowego przy użyciu podejścia przezszklutowego lub podszklutowego jest następujący:

• urządzenie ultradźwiękowe z przetwornikiem zakrzywionym (macierz fazowa) (2-8 MHz), sterylnym rękawem i żelem
• Standardowa taca blokująca nerwy
• jedna strzykawka 20 mL zawierająca środek miejscowo znieczulający
• a 100 mm, 21-do 22-gauge, short – bevel, izolowana igła stymulująca
• stymulator nerwów obwodowych
• sterylne rękawice

Dowiedz się więcej o sprzęcie do obwodowych bloków nerwowych

punkty orientacyjne i pozycjonowanie pacjenta

w przypadku podejścia przezśrodkowego lub podśrodkowego pacjent jest umieszczany w bocznej pozycji odcięgna (ryc. 9 i 10). Kończyny są zgięte na biodrze i kolanie. Gdy stymulacja nerwów jest używany jednocześnie (zalecane), ekspozycja ścięgien ścięgien, łydki, i stopy jest wymagane do wykrywania i interpretacji odpowiedzi motorycznych.

osteoporozy guzowatości krętarza większego i kulszowej są palpowane i, w razie potrzeby, oznaczone markerem skóry. Początkowa pozycja przetwornika znajduje się w zagłębieniu między dwiema kostnymi strukturami.

cel

celem jest umieszczenie końcówki igły w pobliżu nerwu kulszowego, głęboko do mięśnia pośladkowego (technika transglutealna) i osadzenie 15-20 mL miejscowego środka znieczulającego, aż do momentu, w którym widoczne będzie odpowiednie rozprzestrzenianie się w pobliżu nerwu.

technika

opis techniki w tym rozdziale skupi się przede wszystkim na podejściu transglutealnym. Jednakże, ponieważ podejście podśluzówkowe jest wykonywane zaledwie o kilka centymetrów bardziej dystalnie i jest technicznie prostsze do wykonania, blok można wykonać za pomocą dowolnego podejścia, postępując zgodnie z ogólnymi wytycznymi podanymi tutaj i odwołując się do Fig.9 i Fig. 11.

skóra jest dezynfekowana, a przetwornik jest umieszczony w celu identyfikacji nerwu kulszowego (patrz rycina 10). Przechylenie przetwornika proksymalnie lub dystalnie może pomóc poprawić kontrast i wydobyć nerw „z tła” mięśni. Często nerw jest lepiej zobrazowany po wstrzyknięciu znieczulenia miejscowego. Alternatywnie przesunięcie przetwornika nieco proksymalne lub dystalne może poprawić jakość obrazu i umożliwić lepszą wizualizację.
po zidentyfikowaniu igła jest włożona w płaszczyznę, zwykle od bocznego aspektu przetwornika i wysunięta w kierunku nerwu kulszowego. Jeśli stosuje się stymulację nerwów (1,0 mA, 0.1 msec), przejście igły przez powięź w przedniej części mięśnia pośladkowego często wiąże się z reakcją motoryczną łydki lub stopy.

Po umieszczeniu końcówki igły w pobliżu nerwu (Fig.12) i po starannym aspiracji, aby wykluczyć umieszczenie igły wewnątrznaczyniowej, wstrzykuje się 1-2 mL miejscowego środka znieczulającego w celu zobrazowania właściwego miejsca wstrzyknięcia. Takie wstrzyknięcie często wypiera nerw kulszowy z dala od igły; w związku z tym, dodatkowy postęp igły 1-2 mm w kierunku nerwu może być konieczne w celu zapewnienia właściwego miejscowo rozprzestrzeniania znieczulenia. Może być konieczne dodatkowe przestawianie igły i wstrzyknięcie. Zapewnienie braku wysokiej odporności na wstrzyknięcie w celu zmniejszenia ryzyka wstrzyknięcia wewnątrzgałkowego ma ogromne znaczenie, ponieważ końcówka igły jest trudna do wizualizacji ze względu na stromy kąt i głębokość umieszczenia igły.
chociaż pojedyncze wstrzyknięcie 15-20 mL miejscowego środka znieczulającego zwykle wystarcza, korzystne może być wstrzyknięcie dwóch do trzech mniejszych porcji w różnych miejscach, aby zapewnić rozprzestrzenianie się miejscowego roztworu znieczulającego wokół nerwu kulszowego.

wskazówki

• nigdy nie wstrzykiwać w przypadku wysokiej oporności (> 15 psi), ponieważ może to sygnalizować wstrzyknięcie dooponowe. Nawet eksperci mogą przegapić oznaki wstrzyknięcia dooponowego.
• chociaż niektórzy autorzy sugerują, że wstrzyknięcie dooponowe jest bezpieczne dla nerwu kulszowego, biorąc pod uwagę wysoki udział tkanki łącznej w stosunku do faszycles, najlepiej unikać, ponieważ niezawodną blokadę można uzyskać poprzez wstrzyknięcie wokół nerwu. Zdolność do odróżnienia nerwu kulszowego od otoczenia tkanek miękkich często poprawia się po wstrzyknięciu znieczulenia miejscowego; w ten sposób można wykorzystać jako marker do identyfikacji nerwu, gdy rozpoczyna się wstrzyknięcie.

ciągły blok rwy kulszowej prowadzony ultradźwiękami

cel ciągłego bloku nerwu kulszowego jest podobny do celu technik innych niż Amerykańskie: umieszczenie cewnika w pobliżu nerwu kulszowego między mięśniami pośladkowymi maximus i quadratus femoris. Procedura jest podobna do poprzednio opisanej w bloku ciągłym sterowanym ultradźwiękami w bloku splotu szyjnego sterowanym ultradźwiękami.
przesunięcie igły w płaszczyźnie w kierunku bocznym do przyśrodkowego, aż końcówka przylega do nerwu i głęboko do powięzi pośladkowej powinno zapewnić odpowiednie położenie cewnika. Prawidłowe umieszczenie igły można również potwierdzić poprzez uzyskanie odpowiedzi motorycznej łydki lub stopy, w którym wstrzykuje się 4-5 mL znieczulenia miejscowego. Ta niewielka dawka znieczulenia miejscowego służy do zapewnienia odpowiedniej dystrybucji znieczulenia miejscowego, a także do ułatwienia zaawansowania cewnika. Ta pierwsza faza procedury nie różni się znacząco od techniki pojedynczej iniekcji.

alternatywnie cewnik można wstawić za pomocą widoku wzdłużnego. Dzięki takiemu podejściu, po pomyślnym obrazowaniu nerwu kulszowego w widoku przekrojowym, przetwornik obraca się o 90 stopni, tak aby nerw kulszowy był wizualizowany w widoku podłużnym. Jednak takie podejście wymaga znacznie większych umiejętności obrazowania w USA.

cewnik jest zabezpieczony poprzez przyklejenie go do skóry lub tunelowanie. Wspólna strategia infuzji obejmuje 0,2% ropiwakainę z szybkością 5 mL / minutę z kontrolowanym przez pacjenta bolusem 5 mL / h.

Kliknij tutaj, aby uzyskać dodatkowe informacje o ciągłych blokach nerwów obwodowych

• Abdallah FW, Chan VW, Koshkin a, Abbas S, Brull R: ultradźwiękowy blok nerwu kulszowego u pacjentów z nadwagą i otyłością: randomizowane porównanie czasu działania między technikami przestrzeni podszklutowej i podszklutowej. Reg Anesth Pain Med 2013; 38:547-552.
• Meng s, Lieba-Samal D, Reissig LF, et al: USG o wysokiej rozdzielczości tylnego nerwu skórnego kości udowej: wizualizacja i wstępne doświadczenia z pacjentami. Skeletal Radiol 2015; 44:1421-1426.
• Krediet AC, Moayeri N, Bleys RL, Groen Gj: Donaneural lub extraneural: dokładność diagnostyczna oceny USG w celu lokalizacji wstrzyknięcia o małej objętości. Reg Anesth Pain Med 2014; 39: 409-413.
• Hara K, Sakura S, Yokokawa N, Tadenuma s: częstość występowania i skutki niezamierzonego wstrzyknięcia dooponowego podczas bloku nerwu kulszowego kierowanego ultradźwiękami. Reg Anesth Pain Med 2012;37: 289-293.
• Sala-Blanch X, López AM, Pomés J, Valls-Sole J, García AI, Hadzic A: Brak klinicznych lub elektrofizjologicznych dowodów uszkodzenia nerwu po wstrzyknięciu dooponowym podczas bloku kulszowego podkolanowego. Anestezjologia 2011;115: 589-595.
• Abbas S, Brull R: blok nerwu kulszowego sterowany ultradźwiękami: opis nowego podejścia w przestrzeni podśluzówkowej. Br J Anaesth 2007; 99: 445-446.
• Abdallah FW, Brull r: czy blok nerwu kulszowego jest korzystny w połączeniu z blokiem nerwu udowego w przypadku analgezji pooperacyjnej po całkowitej artroplastyce kolana? Przegląd systematyczny. Reg Anesth Pain Med 2011; 36: 493-498.
• Abdallah FW, Brull R: Blok nerwu kulszowego na analgezję po całkowitej artroplastyce kolana: ława jest nadal Na Zewnątrz. Reg Anesth Pain Med 2012; 37: 122-123.
• Abdallah FW, Chan VW, Gandhi R, Koshkin a, Abbas S, Brull R: przeciwbólowe skutki proksymalnego, dystalnego lub braku blokady nerwu kulszowego na ból tylnego kolana po całkowitej endoprotezoplastyce stawu kolanowego: podwójnie ślepe randomizowane badanie kontrolowane placebo. Anestezjologia 2014;121: 1302-1310.
• Barrington MJ, Lai SL, Briggs CA, Ivanusic JJ, Gledhill SR: ultrasound-guided midthigh sciatic nerve block—a clinical and anatomical study. Reg Anesth Pain Med 2008;33: 369-376.
• Benzon HT, Katz ja, Benzon HA, Iqbal MS: Piriformis syndrome: anatomic considerations, a new injection technique, and a review of the literature. Anestezjologia 2003;98: 1442-1448.
• Bruhn J, Moayeri N, Groen Gj, et al: punkt orientacyjny tkanek miękkich do ultradźwiękowej identyfikacji nerwu kulszowego w okolicy podścielnej: ścięgno długiej głowy mięśnia dwugłowego kości udowej. Acta Anestezjol Scand 2009;53: 921-925.
• Bruhn J, van Geffen GJ, Gielen MJ, Scheffer Gj: Wizualizacja przebiegu nerwu kulszowego u dorosłych ochotników za pomocą ultrasonografii. Acta Anestezjol Scand 2008;52: 1298-1302.
• Cao X, Zhao X, Xu J, Liu z, Li Q: technologia wspomagana ultradźwiękami a neurostymulacja w blokach nerwu kulszowego: metaanaliza. Int J Clin Exp Med 2015; 8: 273-80.
• Chan VW, Nova H, Abbas S, McCartney CJ, Perlas a, Xu DQ:. Badanie ultrasonograficzne i lokalizacja nerwu kulszowego: badanie ochotników. Anestezjologia 2006;104:309-314.
• Chantzi C, Saranteas T, Zogogiannis J, Alevizou N, Dimitriou V: USG nerwu kulszowego przedniego uda u otyłych pacjentów. Acta Anestezjol Scand 2007; 51: 132.
• Danelli G, Ghisi D, Fanelli a i in.: wpływ wskazówek ultradźwiękowych i neurostymulacji na minimalną skuteczną objętość znieczulającą mepiwakainy 1,5% wymaganą do zablokowania nerwu kulszowego przy użyciu podejścia podszklutowego. Anesth Analg 2009;109: 1674-1678.
• Danelli G, Ghisi D, Ortu a: technika ultrasonografii i znieczulenia regionalnego: czy naprawdę istnieją ograniczenia techniczne w zakresie wskazówek ultrasonograficznych w blokach nerwu kulszowego? Reg Anesth Pain Med 2008;33: 281-282.
• Dillow JM, Rosett RL, Petersen TR, Vagh FS, Hruschka JA, Lam NC: Ultradźwiękowe podejście parasacral do bloku nerwu kulszowego u dzieci. Paediatr Anaesth 2013;23: 1042-1047.
• Domingo-Triado V, Selfa S, Martinez F, et al: ultrasound guidance for lateral midfemoral sciatic nerve block: a prospective, comparative, randomized study. Anesth Analg 2007;104: 1270-1274.
• Fredrickson MJ, Kilfoyle Dh: Neurological complication analysis of 1000 ultrasound guided peripheral nerve blocks for elective orthopaedic surgery: a prospektywne badanie. Anestezjologia 2009;64: 836-844.
• Gnaho a, Eyrieux S, Gentili M: Zatrzymanie akcji serca podczas bloku nerwu kulszowego kierowanego ultradźwiękami połączone ze stymulacją nerwów. Reg Anesth Pain Med 2009;34: 278.
• Gray AT, Collins AB, Schafhalter-Zoppoth I: blok nerwu kulszowego u dziecka: podejście sonograficzne. Anesth Analg 2003; 97: 1300-1302.
• Hamilton PD, Pearce CJ, Pinney SJ, Calder JD: Sciatic nerve blockade: a survey of orthopaedic foot and ankle specialists in North America and the United Kingdom. Foot Ankle Int 2009; 30: 1196-1201.
• Hara K, Sakura S, Yokokawa N: Rola stymulacji elektrycznej w bloku nerwu kulszowego sterowanego ultradźwiękami: retrospektywne badanie wpływu wzorca odpowiedzi i minimalnego prądu wywołanego na blokadę wynikową. J Anesth 2014;28: 524-531.
• Karmakar MK, Kwok WH, Ho AM, Tsang K, Chui PT, Gin T: ultrasoundguided sciatic nerve block: description of a new approach at the subgluteal space. Br J Anaesth 2007; 98: 390-395.
• Keplinger m, Marhofer P, Marhofer D, et al: Effective local Anesthetic volumes for rwa kulszowa blockade: a clinical evaluation of the ED99. Anestezjologia 2015; 70: 585-590.
• Krediet AC, Moayeri N, Bleys RL, Groen Gj: Donaneural lub extraneural: dokładność diagnostyczna oceny USG w celu lokalizacji wstrzyknięcia o małej objętości. Reg Anesth Pain Med 2014; 39: 409-413.
• Latzke D, Marhofer P, Zeitlinger m, et al: Minimalne wielkości znieczulenia miejscowego dla bloku nerwu kulszowego: ocena ED 99 u ochotników. Br J Anaesth 2010;104: 239-244.
• Marhofer P, Harrop-Griffiths w, Willschke H, Kirchmair L: Fifteen years of ultrasound guidance in regional anaesthesia: Part 2-recent developments in block techniques. Br J Anaesth 2010;104: 673-683.
• Meng s, Lieba-Samal D, Reissig LF, et al: USG o wysokiej rozdzielczości tylnego nerwu skórnego kości udowej: wizualizacja i wstępne doświadczenia z pacjentami. Skeletal Radiol 2015; 44:1421-1426.
• Moayeri N, van Geffen GJ, Bruhn J, Chan VW, Groen Gj: Correlation among USG, cross-sectional anatomy, and histology of the RWA nerwu: a review. Reg Anesth Pain Med 2010; 35: 442-449.
• Murray JM, Derbyshire S, Shields MO: klocki kończyn dolnych. Anestezjologia 2010;65 (Suppl 1): 57-66.
• Oberndorfer U, Marhofer P, Bosenberg A, et al: Wytyczne ultrasonograficzne dla blokad nerwu kulszowego i udowego u dzieci. Br J Anaesth 2007; 98: 797-801.
• Osaka Y, Kashiwagi m, Nagatsuka Y, Miwa s: USG-guided medial midthigh approach to rwa kulszowa block with a patient in a supine position. J Anesth 2011;25: 621-624.
• Ota J, Sakura S, Hara K, Saito Y: USG-guided anterior approach to rwa kulszowa Block: A comparison with the posterior approach. Anesth Analg 2009;108: 660-665.
• Pham Dang C, Gourand D: usg nerwu kulszowego w podejściu bocznym śródmięśniowym. Reg Anesth Pain Med 2009;34: 281-282.
• Ponde V, Desai AP, Shah D: Comparison of success rate of USG-guided sciatic and femoral nerve block and neurostymulation in children with arthrogryposis multiplex congenita: a randomized clinical trial. Paediatr Anaesth 2013; 23: 74-78.
• Quah VY, Hocking G, Froehlich K: wpływ pozycji nóg na głębokość i wygląd sonograficzny nerwu kulszowego u ochotników. Anaesth Intensive Care 2010;38:1034-1037.
• Reinoso-Barbero F, Saavedra B, Segura-Grau E, Llamas A: Anatomiczne porównanie nerwów kulszowych między dorosłymi i noworodkami: implikacje kliniczne dla bloku sterowanego ultradźwiękami. J Anat 2014;224: 108-112.
• Salinas FV: USG i przegląd dowodów na blokadę nerwów obwodowych kończyny dolnej. Reg Anesth Pain Med 2010;35:S16-25.
• Saranteas T: ograniczenia w technikach obrazowania ultrasonograficznego w znieczuleniu: otyłość i zanik mięśni? Anesth Analg 2009;109: 993-994.
• Saranteas T, Chantzi C, Paraskeuopoulos T, et al: obrazowanie w znieczuleniu: rola sondy ultradźwiękowej sector array 4 MHz do 7 MHz w identyfikacji nerwu kulszowego w różnych lokalizacjach anatomicznych. Reg Anesth Pain Med 2007;32:537-538.
• Saranteas T, Chantzi C, Zogogiannis J, et al: boczne badanie nerwu kulszowego i lokalizacja na poziomie połowy kości udowej: badanie obrazowe za pomocą ultradźwięków. Acta Anestezjol Scand 2007;51: 387-388.
• Saranteas T, Kostopanagiotou G, Paraskeuopoulos T, Vamvasakis E, Chantzi C, Anagnostopoulou s: badanie ultrasonograficzne nerwu kulszowego w dwóch różnych miejscach w bocznym udzie: nowe podejście do identyfikacji potwierdzone preparatami anatomicznymi. Acta Anestezjol Scand 2007; 51: 780-781.
• strony BD, Neal JM, Chan V: USG w znieczuleniu regionalnym: gdzie należy ustawić „ostrość”? Reg Anesth Pain Med 2009;34:531-533.
• Taha AM: prosta i skuteczna technika sonograficzna do identyfikacji nerwu kulszowego w obszarze parasacral. Can J Anaesth 2012;59: 263-267.
• Tammam TF: ultrasound-guided infragluteal sciatic nerve block: A comparison between four different techniques. Acta Anestezjol Scand 2013;57: 243-248.
• Tran DQ, Muñoz L, Russo G, Finlayson RJ: Ultrasonography and stimulating perineural catheters for nerve blocks: a review of the evidence. Can J Anaesth 2008; 55: 447-457.
• Tsui BC, Dillane D, Pillay J, Ramji AK, Walji AH: Cadaveric ultrasound imaging for training in ultrasound-guided peripheral nerve blocks: lower extremity. Can J Anaesth 2007; 54: 475-480.
• Tsui BC, Finucane BT: the importance of ultrasound landmarks: a” traceback ” approach using the podkolanowych naczyń krwionośnych dla identyfikacji nerwu kulszowego. Reg Anesth Pain Med 2006; 31: 481-482.
• Tsui BC, Ozelsel TJ: ultradźwiękowy blok nerwu kulszowego przedniego z zastosowaniem podejścia podłużnego: „expanding the view.”Reg Anesth Pain Med 2008; 33: 275-276.
• van Geffen GJ, Bruhn J, Gielen m: ciągłe blokady nerwu kulszowego prowadzone ultradźwiękami u dwójki dzieci z wadami rozwojowymi żylnymi kończyny dolnej. Can J Anaesth 2007; 54: 952-953.
• van Geffen GJ, Gielen m: ultrasound-guided subgluteal sciatic nerve blocks with stimulating catheters in children: a descriptive study. Anesth Analg 2006;103: 328-333.
• Young DS, Cota A, Chaytor R: Ciągły blok nerwu kulszowego podświetlanego do kontroli bólu pooperacyjnego po całkowitej artroplastyce stawu skokowego. Foot Ankle Spec 2014;7: 271-276.