Articles

határok molekuláris Biosciences

Bevezetés

a genetikai kód definiáltuk degenerált alapuló Crick fagyasztott baleset elmélet (Crick, 1968). Az aminosavak különböző beépülési frekvenciákat mutatnak; azonban a specifikus kodonoknak felelősnek kell lenniük a kialakulóban lévő polipeptidláncba történő megfelelő szállításért és beépülésért (Woese et al., 2000). A genetikai kód degenerációja nem statikus, dinamizmusa nem szokásos aminosavakkal azonosítható. Az egyik példa a szelenocisztein (Sec, U), huszonegyedik aminosavként denominálva, amelyet a 80-as évek elején fedeztek fel, amelyet hagyományosan UGA-kodon felismeréssel építenek be a keretbe (Diamond et al., 1981). Ezt a kodont kanonikusan stop-kodonként azonosítják; a sejtgép azonban megtalálta a módját, hogy ezt a jelentést aminosav-beépülési helyzetbe változtassa. Érdekes módon az UAG-kodon, egy másik stop-kodon, felismerhető Sec vagy pirrolizin (Pyl, O), egy másik nem kanonikus, hagyományosan beépített aminosav (Srinivasan et al., 2002).

az évek során a molekuláris mechanizmust, amely lehetővé teszi az UGA-félreértelmezést a Sec beépüléséhez, egy specifikus mRNS elemtől, nevezetesen a SECIS-től (Szelenocisztein beépülési szekvencia) függ. Ez az egyedülálló szekvencia az mRNS redők egy hajtű konformáció downstream, a baktériumok, vagy a 3′ lefordítatlan Régió–3 ‘ UTR Archaea és Eukarya, változó értelmezése a kanonikus UGA-stop kodon UGA-Sec beépítése (Su et al., 2005). A teljes sec beépülési mechanizmust teljes mértékben leírják a baktériumokban, ahol a SECIS elemet a transzlációs folyamat során a riboszóma mozgása bontja ki egy specifikus megnyúlási tényező jelenlétében a Sec beépüléséhez (SelB vagy EFSec) (Fischer et al., 2016). Azonban a SECIS pozicionálás mechanizmusa az UGA-kodon pozíció tetején az Archaea és Eukarya sec beépítése során még nem ismert.

A Sec másik sajátossága a Sec-specifikus tRNS. A tRNASec a legtöbb organizmusban jelen van, és eltérő “8+5” (baktériumok) vagy “9+4” (Archaea/Eukarya) lóhere levele konformációval rendelkezik, összehasonlítva a hagyományos “7+5” akceptorral/t ons-hurokhajtással (Serr Xhamo et al., 2018). Nyilvánvaló, hogy az UCA-anticodon egy másik kulcs a specifikusságához, amely magában foglalja a leghosszabb változó karot is. Mindegyik specifikus jellemző kritikus a tRNS érése és terhelése szempontjából a Sec bioszintézis útvonala alatt.

kezdetben a tRNASec nem töltődik be Sec aminosavval, hanem szerinnel (Ser, S) a szeril-tRNS szintetáz (SerRS), ami köztes Ser-tRNASec-et eredményez. Általában az amino-Acil-tRNS-szintetázok nagyon specifikus enzimek, amelyek felismerik az egyedi tRNS-molekulákat, hogy azok specifikus aminosavakkal töltődjenek fel. A SerRS azonban egy II. osztályú amino-Acil-tRNS szintetáz, amely különleges felismeréssel rendelkezik az akceptorral és a ser és/vagy Sec tRNS hosszú változó karjával szemben, ami nem specifikusságot biztosít az anti-kodonnal szemben (Schimmel and Soll, 1979).

a köztes Ser-tRNASec–et a Szelenocisztein–szintáz-SelA–ba szállítják baktériumokban–vagy foszfoszeril-tRNS-kináz-PSTK-Ba Archaea/Eukarya-ban-Ser/Sec átalakítás céljából. Baktériumokban a homodekamerikus SelA, egy piridoxál-5 ‘ – foszfát (PLP) függőségi enzim felelős ezért az átalakulásért, amely egy ternáris 1,3 MDa komplex gépet képez (Silva et al., 2015). Ezt az átmeneti komplexet a SelA közötti kölcsönhatás állítja össze.Ser-tRNASec bináris komplex és egy szelenofoszfát–szintetáz (SelD) nevű enzim, amely felelős a szelén donor–szelenofoszfát-szállításáért, és biztosítja a katalitikus zsebet az érett Sec-tRNASec előállításához (Silva et al., 2015). A szelénvegyületek citotoxikusak, ami külön mechanizmust igényelhet a sejthalál elkerülése érdekében. Az alacsony toxicitási szint fenntartásának alternatívája a szelénvegyület biológiai és hasznos forrássá történő újrahasznosítása szelenofoszfátként. Ez az átalakítás egy nem Sec útvonal-specifikus enzimet-szelenocisztein–liázt (CsdB)–tartalmaz, amely a SEC újrahasznosítását szeleniddé alakítja, amely nagyon mérgező a sejtekre. Az eredmények azt sugallták, hogy a CsdB.A SelD kölcsönhatásba lép a környezet védelme érdekében, és katalizálja a szelén foszforilációját az organizmusoktól függetlenül (Itoh et al., 2009).

másrészt az Archaea és Eukarya esetében a Sec bioszintézise eltérő, és két különböző lépésre oszlik. A ser-tRNASec-ben jelen lévő kezdeti ser-maradékot PSTK foszforilezi, ami köztes o-foszposzeril – (Sep) – tRNASec-et eredményez. Az átalakulást követően az o-foszfozeril-tRNASec szelén transzferáz (Sepsec–egy PLP-függő enzim) végzi a Sep/Sec átalakítást, amelynek eredményeként az érett Sec-tRNASec (Liu et al., 2014). A biológiai szelénvegyületet a baktériumok esetében említettek szerint szállítják.

egy másik fő különbség a Sec és más aminosavak között a beépülési folyamat. Az érett Sec-tRNASec-et egyedi megnyúlási faktorok (SelB vagy EFSec) ismerik fel és juttatják be a riboszomális gépbe, amelyek nemcsak a hagyományos aminosavak beépülését, azaz az L30 riboszomális alegységet és a tRNS-t képesek felismerni, hanem felismerik a SECIS és/vagy SECIS-kötő fehérjéket (SBP-k) is (Fletcher et al., 2001). Az SBP-k az Eukarya-ban alapított fehérjék, amelyek azonosítják a SECIS elemeket a 3′-UTR-en, és segítik annak kölcsönhatását az eEFSec-kel a Sec beépülése érdekében (Fletcher et al., 2001). A baktériumokban a SelB képes azonosítani mindhárom elemet (riboszóma, Érett tRNASec és SECIS elem). Ez a mechanizmus a kulcs, amely lehetővé teszi az UGA-félreértelmezést, és bevezeti a SEC-t a születő polipeptid részeként. Ez a mechanizmus inspirálta a kutatókat az új erőfeszítésekben, hogy megértsék és használják ezt a genetikai kód kiterjesztést a fehérjetechnika és a szintetikus biológia javítására (Miller et al., 2015). A mutációk és a kimérák lehetővé tették az aminosavak nem specifikus beépülését a különböző kodonokba, pl., végezze el a kanonikus aminosavak beépülését az UGA-kodonba a szelb-Cterminal doménnel fuzionált megnyúlási tényezők (EFTu) alkalmazásával, amely felelős a SECIS felismeréséért (Soll, 2015). A szintetikus biológia további fejlesztése folyamatban van, és az eredmények inspirálni fogják, és a közeljövőben megszakítják ezt a területet.

Ezen túlmenően, ennek a beépülési mechanizmusnak a teljes megértése jelenleg segíti a fehérje mérnöki folyamatot és a szintetikus biológiát, lehetővé téve a genetikai kód” új kiterjesztését ” az aminosavak beépülésének manipulálásával (Mukai et al., 2017).

Sec egy példa erre a terjeszkedés, hogy a természet tette, hogy növelje a variabilitás a fehérjék, funkció, valamint megakadályozza a sejt toxicitás. Ennek a mechanizmusnak a teljes megértése segíthet megérteni a fehérje evolúciós folyamatokat és a makromolekuláris kölcsönhatásokat, amelyek lehetővé teszik számunkra, hogy új módszereket és módszereket tervezzünk a lehetőségek szintetikus biológiára való kiterjesztésére.

megbeszélés

a SEC beépítési nyúlási tényező fontosságát és egyediségét hangsúlyozzák, amikor a komplex rendszert 30 éves kiterjedt kutatás során teljes körűen leírták. Az olyan szempontok, mint például, hogy hogyan szabályozhatja a szelenoproteinek expresszióját oxidatív stressz alatt, vagy hogyan lehet folytatni az UGA-stop félreértelmezést, lenyűgözőek a genetikai kód megértéséhez és kibővítéséhez. Ugyanazon információ átírásának vagy értelmezésének új módjai kibővítik a genetikai kód határait, nemcsak a fehérjetechnika sokféleségének és lehetőségeinek növelésével, hanem új betekintést is teremtenek a specifikus enzimek és fehérjék kodifikálásához. Az egész Sec bioszintézis útvonal egyedülálló, azonban az EF-UGA felismerés a fő oka annak, hogy a Sec különbözik. Az EF általában felismeri a beépítő gépet az aminosav beépülésének megfelelő helyzetben.

Ezenkívül ez a mechanizmus felhasználható a beépítési folyamat hatékonyságával, pontosságával és a különböző fajok megőrzésével kapcsolatos kérdések megválaszolására. A Sec beépítése elsősorban a SelB, a speciális EF miatt különbözik, amely lehetővé teszi az UGA-Sec felismerést egy mRNS elem alapján. Evolúciós, A Sec-EF megváltozott, hogy felismerjen egy másik partnert, amely segít a Sec-tRNASec megfelelő vezetésében a riboszomális üregbe, hatékonyabbá téve ezt a folyamatot.

mint korábban említettük, a kutatók már elkezdték megérteni és használni a Sec gépezetét, hogy kimérákat hozzanak létre, amelyek lehetővé teszik számunkra, hogy megváltoztassuk a kodon felismerését. Az EFs-ről és annak kölcsönhatásairól szóló további tanulmányok a SelB/eEFSec példáján keresztül új betekintést nyújthatnak az új genetikai terjeszkedés korszakába.

szerzői hozzájárulások

minden felsorolt szerző jelentős, közvetlen és szellemi hozzájárulást nyújtott a műhöz, és jóváhagyta a közzétételt.

összeférhetetlenség

a szerzők kijelentik, hogy a kutatást olyan kereskedelmi vagy pénzügyi kapcsolatok hiányában végezték, amelyek potenciális összeférhetetlenségnek tekinthetők.

Crick, F. H. C. (1968). A genetikai kód eredete. J. Mol. Biol. 38:367. doi: 10.1016/0022-2836(68)90392-6

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Diamond, A., Dudock, B., and Hatfield, D. (1981). A szarvasmarha máj UGA szuppresszor szerin tRNS szerkezete és tulajdonságai triptofán antikodonnal. 25-ös cella, 497-506. doi: 10.1016/0092-8674(81) 90068-4

PubMed absztrakt | CrossRef teljes szöveg | Google Tudós

Fischer, N., Neumann, P., Bock, L. V., Maracci, C., Wang, Z., Paleskava, A., et al. (2016). A Selb nyúlási faktor gtpáz aktiválásának útja a riboszómán. Természet 540, 80-85. doi: 10.1038 / nature20560

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Fletcher, J. E., Copeland, P. R., Driscoll, D. M., and Krol, A. (2001). A szelenocisztein beépülő gépezet: kölcsönhatások a SECIS RNS és a SECIS-kötő fehérje, az SBP2 között. RNS 7, 1442-1453.

PubMed absztrakt/Google Tudós

Itoh, Y., Sekine, S. I., Matsumoto, E., Akasaka, R., Takemoto, C., Shirouzu, M., et al. (2009). A szelenofoszfát-szintetáz szerkezete elengedhetetlen a szelén fehérjékbe és RNS-ekbe történő beépüléséhez. J. Mol. Biol. 385, 1456–1469. doi: 10.1016 / j. jmb.2008.08.042

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Liu, Y. C., Nakamura, A., Nakazawa, Y., Asano, N., Ford, K. A., Hohn, M. J., et al. (2014). Ancient translation factor is essential for tRNA-dependent cysteine biosynthesis in methanogenic archaea. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 111, 10520–10525. doi: 10.1073/pnas.1411267111

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

Miller, C., Brocker, M. J., Prat, L., Ip, K., Chirathivat, N., Feiock, A., et al. (2015). A synthetic tRNA for EF-Tu mediated selenocysteine incorporation in vivo and in vitro. FEBS Lett. 589, 2194–2199. doi: 10.1016/j.febslet.2015.06.039

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

Mukai, T., Lajoie, M. J., Englert, M., and Soll, D. (2017). A genetikai kód átírása. Annu. Microbiol Tiszteletes. 71,557–577. doi: 10.1146 / annurev-micro-090816-093247

PubMed absztrakt | CrossRef teljes szöveg | Google Tudós

Schimmel, P. R., and Soll, D. (1979). Aminoacil transzfer RNS-szintetázok a transzfer-RNS-ek általános jellemzői és felismerése. Annu. Biochem Tiszteletes. 48, 601–648. doi: 10.1146/annurev.bi.48.070179.003125

CrossRef Full Text/Google Scholar

Serr GmbH, V. H. B., Silva, I. R., Silva, M. T. A., Scortecci, J. F., Fernandes, A. F., és Thiemann, O. H. (2018). Az egyedülálló tRNASec és szerepe a szelenocisztein bioszintézisében. Aminosavak 50, 1145-1167. doi: 10.1007 / s00726-018-2595-6

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Silva, I. R., Serrao, V. H. B., Manzine, L. R., Faim, L. M., da Silva, M. T. A., Makki, R. et al. (2015). Ternáris komplex kialakulása a szelenocisztein bioszintéziséhez baktériumokban. J. Biol. Kémia. 290, 29178–29188. doi: 10.1074 / jbc.M114. 613406

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Soll, D. (2015). TRNS-vezérelt kutatási út a szintetikus kémiától a szintetikus biológiáig. RNS 21, 742-744. doi: 10.1261 / RNS.050625.115

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Srinivasan, G., James, C. M., and Krzycki, J. A. (2002). Az UAG által kódolt Pirrolizin Archaea – ban: UAG-dekódoló speciális tRNS töltése. Tudomány 296, 1459-1462. doi: 10.1126 / tudomány.1069588

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Su, D., Li, Y. H., and Gladyshev, V. N. (2005). Szelenocisztein behelyezés, amelyet a 3a 3RNS választ ki. tRNEscherichia coli. Nukleinsavak Res. 33, 2486-2492. doi: 10.1093 / nar / gki547

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós

Woese, C. R., Olsen, G. J., Ibba, M., and Soll, D. (2000). Aminoacil-tRNS szintetázok, a genetikai kód és az evolúciós folyamat. Mikrobiol. Mol. Biol. Rev. 64, 202-236. doi: 10.1128 / MMBR.64.1.202-236.2000

PubMed absztrakt / CrossRef teljes szöveg / Google Tudós